Desenvolvimento de um protótipo de inseticida empregando as secreções das glândulas parotoides do sapo Rhinella schneideri

Autores

  • Beatris Truzzi Silva Universidade do Oeste Paulista – Unoeste, campus Presidente Prudente
  • Nádia Yoshie Yamauti Universidade do Oeste Paulista – Unoeste, campus Presidente Prudente
  • Marina Vieira Martins Instituto Federal do Paraná - IFPR, campus Palmas.
  • Fernando Antonio Pino Anjolette Instituto Federal do Paraná - IFPR, campus Palmas.

DOI:

https://doi.org/10.18227/rsd.v7i1.7667

Palavras-chave:

inseticida, Rhinella schneideri, sapo, baratas, Nauphoeta cinerea

Resumo

Introdução: substâncias químicas com capacidade de eliminar e/ou repelir insetos são denominadas inseticidas. Quando surgiu a necessidade do uso de inseticidas, foram utilizados compostos químicos altamente tóxicos e estes agiram não somente nos insetos, mas também nos seres humanos e no meio ambiente. A partir disso, iniciaram-se diversos estudos com o objetivo de encontrar ou sintetizar novos compostos com ação seletiva apenas para insetos. Objetivos: o objetivo deste estudo foi, a partir de estudos de toxicidade das secreções das glândulas parotoides do sapo Rhinella schneideri, elaborar um protótipo de inseticida. Métodos: para isso, foram realizados o teste agudo de toxicidade e avaliação da atividade inseticida tópica em baratas do gênero Nauphoeta. Resultados: no teste agudo de toxicidade foram testadas quatro soluções compostas por variadas concentrações de secreções das glândulas parotoides (10; 0,1; 0,01 e 0,001 mg/mL) do sapo Rhinella schneideri. A solução de 10 mg/mL foi a única capaz de matar todas das baratas. A partir dessa concentração, um segundo teste de toxicidade foi realizado no qual foi observado que na concentração de 6 mg/mL, aproximadamente, metade do grupo de baratas morreu. O bioensaio tópico foi feito a partir da elaboração de um protótipo de inseticida composto por 10 mg/mL do veneno das glândulas parotoides do sapo em 20% do solvente orgânico (acetona), empregado como veículo. Neste bioensaio, a morte de todas as baratas foi verificada após 24h. Conclusão: foi possível concluir que o protótipo de inseticida elaborado a partir das secreções das glândulas parotoides do sapo Rhinella schneideri, tendo como veículo o solvente orgânico acetona 20%, foi capaz de eliminar as baratas do gênero Nauphoeta revelando, assim, a eficiência do protótipo desenvolvido.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

ASHURST, J.V.; NAPPE, T.M. Methanol Toxicity [Updated 2021 Jun 26]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing. Disponível em: https://www.ncbi.nlm. nih.gov/books/NBK482121/ Acesso em 25 fev 2022.

BARBOSA, F. R.; SILVA, C. S. B.; CARVALHO, G. K. L.Uso de inseticidas alternativos no controle de pragas agrícolas. Petrolina: Embrapa Semiárido, 2006, 7-8 p. Disponível em: http://www.cpatsa.embrapa.br/public_ eletronica/downloads/SDC191.pdf. Acesso em: 25 nov. 2019.

BARRAVIERA, B. Venenos animais: uma visão integrada. 1. ed. Rio de Janeiro: Editoria de Publicações científicas, 1994.

BETANCUR, I. G.; GOGINENI, V.; OSPINA, A. S.; LEÓN, F. Perspective on the therapeutics of anti-snake venom. Molecules, USA, v. 24, p. 3276, 2019.

BÓKONY, V. et al. Toads phenotypically adjust their chemical defences to anthropogenic habitat change. Scientific Reports, v. 9, n. 3163, 2019.

BOMAN, H. G. Peptide antibiotics and their role in innate immunity. Annual Review of Immunology, Stockholm, v. 13, p. 61-92, 1995.

CARDOSO, J.L.C., FRANÇA, F.O.S., FAN, H.W., MÁLAQUE, C.M.S., HADDAD. JR. V. (2009) Animais peçonhentos no Brasil: biologia, clínica e terapêutica dos acidentes. São Paulo: Sarvier. 550p.

CATY, S. N. et al. Molecular physiology of chemical defenses in a poison frog. Journal of Experimental Biology, v. 222, n. 12, p. 1-12, 2019.

CHANDLER, D. et al. The development, regulation and use of biopesticides for integrated pest management. Phil. Trans. R. Soc. B, v. 12, n. 366, p. 1987-1998, 2011.

CHANG, J. et al. Bv8-Like Toxin from the Frog Venom of Amolops jingdongensis Promotes Wound Healing via the Interleukin-1 Signaling Pathway. Toxins, v.12, n.15, p. 1-14, 2020.

CHINEDU, E.; AROME, D.; AMEH, F.S. A New Method for Determining Acute Toxicity in Animal Models. Toxicology International, India, v. 20, n. 3, p. 224-226, 2013.

CLARKE, B. T. The natural history of amphibian skin secretions, their normal functioning and potential medical applications. Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society, v. 72, n. 3, p. 365-379, 1997.

COSTA, T. O. G. Purificação e Determinação Estrutural de Substâncias Bioativas em Três Espécies de Osteocephalus (Amphibia: Anura: Hylidae). 2005. 201 f. Tese (Doutorado em Química). - Instituto de Química da Universidade Federal do Rio de Janeiro - UFRJ, Rio de Janeiro.

DORNELLES, M. F.; MARQUES, M. G. B.; RENNER, M. F. Revisão sobre toxinas de Anura (Tetrapoda, Lissamphibia) e suas aplicações biotecnológicas. Revista Ciência em Movimento - Biociências e Saúde, Porto Alegre, v. 12, n. 24, p. 103-117, 2010.

ESCALONA, M. H.; FIALLO, V. R. F.; HERNANDEZ, M. M. A.; PACHECO, R. A.; A.J.A., E. T. P. Plaguicidas naturales de origen botánico. Habana: CIDISAV, 1998. 105 p.

FRANÇA, J. M. S. A composição do veneno do sapo cururuzinho muda de acordo com a sua dieta? Dissertação (Mestrado em Ecologia e Tecnologia Ambiental) –Universidade Federal de Alfenas (Unifal), Alfenas, Minas Gerais, p. 60, 2015.

FUNASA (2001). Controle de vetores: procedimentos de segurança. Fundação Nacional de Saúde. Brasília, Brasil, 187p. Disponível em: http://bvsms.saude.gov.br/bvs/ publicacoes/funasa/controle_vetores.pdf. Acesso 19 novembro 2018.

GARDENAL, I. Pesquisas desvendam funções de proteínas presentes em venenos de cobras. Jornal da UNICAMP, Campinas, n. 457, p.6-7, 2010.

GARG, A.; HIPPARGI, R.; GANDHARE, A. Toad skinsecretions: Potent source of pharmacologically and therapeutically significant compounds. The Internet Journal of Pharmacology, v.5, n. 2. 2007.

GOMES, A. et al. Bioactive molecules from amphibian skin: Their biological activities with reference to therapeutic potentials for possible drug development. Indian Journal of Experimental Biology, India, v. 45, p. 579-593, 2007.

HONG, Z.; CHAN, K.; YEUNG, H. W. Simultaneous determination of bufadienolides in the traditional Chinese medicine preparation, liu-shen-wan, by liquid chromatography. Journal of Pharmacy and Pharmacology, China, v. 44, n. 12, p. 6-1023, 1992.

JARED, C.; ANTONIAZZI, M. M. Anfíbios: biologia e venenos. In: CARDOSO et al. (Ed.). Animais Peçonhentos no Brasil. 2. ed. São Paulo: SARVIER, 2009. cap. 31, p. 317-328.

KLAASSEN, C. D.; WATKINS, J. B. Fundamentos em Toxicologia. 2. ed. Porto Alegre: AMGH, 2010. KO, W.S. et al. Induction of apoptosis by Chan Su, a traditional Chinese medicine, in human bladder carcinoma T24 cells. Oncology Reports, Coréia, v. 14, n. 2, p. 80-475, 2005.

KUMAR, S. Biopesticides: a need for food and environmental safety. J Biofertil Biopestic, v.3, n.4, p. 1-3, 2012.

MACIEL, N. M. et al. Composition of indolealkylamines of Bufo rubescens cutaneous secretions compared to six others Brazilian bufonids with phylogenetic implications. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology, Oxford, v. 134, n. 4, p. 641-649, 2003.

MAZID, S., KALIDA, J.C., RAJKHOWA, R.C. A review on the use of biopesticides in insect pest management. Int J Sci Adv Technol, v. 1, p. 169–178, 2011.

OBARA, M. T. et al. Caracterização de resistência a inseticidas em populações da subfamília Triatominae (Hemiptera: Reduviidae), vetores de Trypanosoma cruzi Chagas, 1909. Tese (Doutorado) – Programa de Pósgraduação em Saúde Pública – Faculdade de Saúde Pública da Universidade de São Paulo, p. 247, 2010.

OLIVEIRA, L. M.; LUCAS, A. J. S.; CADAVEL. C. L.; MELLADO, M. S. Bread enriched with flour from cinereous cockroach (Nauphoeta cinerea). Innovative Food Science & Emerging Technologies. V. 44, p. 30-35, 2017.

PENATTI, F. E. Determinação dos potenciais toxicológicos em organismos aquáticos de resíduos de misturas de solventes orgânicos utilizados em laboratórios. Tese (Doutorado) – Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Centro de Energia Nuclear na Agricultura. Piracicaba, São Paulo, p. 131, 2015.

PRADHAN, S.; MISHRA, D.; SAHU, K. R. Herpetofauna used as traditional medicine by tribes of Gandhamardan Hills Range, Western Orissa, India. International Journal of Research in Zoology, India, v.4, n.2, p.32-35, 2014.

PUBCHEM [Internet]. Bethesda (MD): National Library of Medicine (US), National Center for Biotechnology Information; 2004. PubChem Compound Summary for CID 180, Acetone. Disponível em: https://pubchem.ncbi.nlm.nih. gov/compound/Acetone Acesso em 22 fev 2022.

RAAYMAKERS, C. et al. A new family of diverse skin peptides from the microhylid frog genus phrynomantis. Molecules, v. 18, n. 25, p. 1-18, 2020.

RAAYMAKERS, C. et al. Antimicrobial peptides in frog poisons constitute a molecular toxin delivery system against predators. Nature communications, v. 8, p. 1495, 2017.

REYES, M.; ANGULO, V. M.; SANDOVAL, C. M. Efecto tóxico de beta-cipermetrina, deltametrina y fenitrotión encepas de Triatoma dimidiate (Latreile, 1811) y Triatoma maculate (Erichson, 1848) (Hemiptera, Reduviidae). Biomédica, v. 27, n. 1, p. 75-82, 2007.

SEGATTO, A. L. A. et al. De novo transcriptome assembly of the lobster cockroach Nauphoeta cinerea (Blaberidae). Genet. Mol. Biol., Ribeirão Preto, v. 41, n. 3, p. 713-721, 2018.

SILVA, F. V. A.; MONTEIRO, W. M.; BERNARDE, P. S. “Kambô” frog (Phyllomedusa bicolor): use in folk medicine and potential health risks. Rev. Soc. Bras. Med. Trop., v. 52, p. 1-2, 2019.

ULLAH, M. I. et al. Arthropods venom used as biopersticides: a new challenge to manage insect pests. Int. J. Agric. Sci., v. 9, n. 1, p. 122-131, 2017.

VALLEJO, J. R.; GONZÁLEZ, J. A. Los anfibios en la medicina popular española, la farmacopea de Plinio y el Dioscórides. História, Ciências, Saúde - Manguinhos, Rio de Janeiro, v.22, n.4, p.1283-1319, 2015.

VÁZQUEZ, P. E. et al. Uso medicinal de la fauna silvestre em los altos de Chiapas, México. Red de Revistas Cientificas de America Latina y el Caribe, España y Portugal, v. 31, n.7, p. 491-499, 2006.

VONARX, E. J. et al. Characterization of insecticidal peptides from venom of australian funnel-web spiders. J. Venom. Anim. Toxins incl. Trop. Dis, v. 12, n.2, p. 215-233, 2006.

WHO-World Health Organization. Protocolo de evaluación de efeito insecticida sobre triatomminos. Acta Toxicológica Argentina, v. 2, p. 29-32, 1994.

YANG, Q. et al. Angel of human health: current research updates in toad medicine. Am J Transl Res. v. 7, n.1, p. 1-14, 2015.

ZANETTI, G.; DUREGOTTI, E.; LOCATELLI, C. A.; GIAMPRETI, A.; LONATI, D.; ROSSETTO, O.; PIRAZZINI, M. Science reports, v. 8, p. 9818, 2018.

ZHANG, P. et al. Quality Evaluation of Traditional Chinese Drug Toad Venom from Different Origins through a Simultaneous Determination of Bufogenins and Indole Alkaloids by HPLC. Chemical & Pharmaceutical Bulletin, v. 53, n.12, p. 1582-1586, 2005.

ZHANG, S. et al. Bee venom therapy: potential mechanisms and therapeutic applications. Toxicon, v. 148, n. 15, p. 64-73, 2018.

ZHANG, Y. Why do we study animal toxins? Zoological research, v. 38, n. 5, p. 183-222, 2015.

Downloads

Publicado

31/12/2023

Como Citar

Truzzi Silva, B., Yoshie Yamauti , N., Vieira Martins, M., & Pino Anjolette, F. A. (2023). Desenvolvimento de um protótipo de inseticida empregando as secreções das glândulas parotoides do sapo Rhinella schneideri. Revista Saúde & Diversidade, 7(1), 10–16. https://doi.org/10.18227/rsd.v7i1.7667

Edição

Seção

Artigos